注：诱导率（％）＝（形成的愈伤组织数量／接种的外植体数量）×100％

注：生长速率＝每天每升培养基中增加的细胞干重克数

Ⅰ.植物、霉菌、细菌等都能产生果胶酶，其中等霉菌生产的果胶酶在食品加工中被广泛使用。为筛选果胶酶高表达菌株，将腐烂水果浸出液接种到以为唯一碳源的固体培养基上培养，选取的单菌落。分离后的菌种再接种到液体培养基中扩大培养，培养液中经分离纯化可获得果胶酶。

Ⅱ.为提高果胶酶的稳定性，可采用的固定方法是将果胶酶先与戊二醛交联，然后再用海藻酸钠等包埋，制成小球。滤出小球以洗涤数次，滤纸吸干，低温保存备用。果胶酶需先与戊二醛交联后再包埋的原因可能是。

Ⅲ.果胶水解的主要产物与3，5-二硝基水杨酸共热呈现棕红色，这一原理可用于固定化果胶酶活性的研究。果胶溶液经固定化酶处理后再加入显色剂，充分反应后，使用法在520nm波长处测定OD值。OD值越大，说明果胶酶活性

Ⅰ.为解决优质人参苗遗传不稳定问题，取人参幼苗茎段经后形成愈伤组织，先在发芽培养基中长成丛状苗，分株后经生根培养获得再生植株，移至草炭土中通过逐渐进行炼苗方可移栽。与胚胎发生途径相比，上述过程不需要经过阶段。

Ⅱ.在黑暗条件下，对人参根进行多次培养，可获得大量根的无性系，用于制药。此外，也可以将人参愈伤组织经培养及筛选形成特定，经规模化悬浮培养后，从培养液中直接获取人参皂苷。

Ⅲ.为进一步研究杂种优势对提高人参药用成分产量的作用，将人参叶片后，置于经过滤除菌的含有酶的高渗透压酶解液中低速震荡处理，获取原生质体。将人参原生质体与胡萝卜原生质体融合，后成为完整的杂种细胞。培养杂种细胞，提取、纯化并检测药用成分，发现多种人参皂苷产量明显上升。